| Titre : | Contribution à l’étude de l’effet prophylactique de l’administration d’un extrait de Pimpinella Anisum (anis vert) chez les rats wistar en développement intoxiqués au mercure. Etude biochimique, histologique et neurocomportementale. |
| Auteurs : | ARABI Wafaa, Auteur ; KAHLOULA Khaled, Directeur de thèse |
| Type de document : | texte imprimé |
| Editeur : | [S.l.] : [S.l.] : Dr. Moulay Tahar Université Saida, Faculté des Sciences Naturelles et de la Vie, 2019 |
| Format : | 113 p / 27cm |
| Accompagnement : | CD |
| Langues: | Français |
| Langues originales: | Français |
| Catégories : | |
| Mots-clés: | Mercury ; Anise ; Depression ; Memory ; Anxiety ; Kidney ; Liver ; Blood |
| Résumé : |
This work consists in evaluating the modifications induced by Mercury (Hg) using several approaches; neurobehavioural, biochemical,
hematological and histological findings in young wistar rats during gestation and lactation, as well as tested the efficacy of the essential oil and aqueous extract of Pimpinella anisum (Green Anise), to restore or not these deleterious effects by treating rats previously intoxicated with a daily intraperitoneal injection dose of 0.25ml/kg/day for the essential oil of this plant for 21 days and with a dose of 500mg/kg/day of aqueous extract by gavage for 15 days. However, extraction by hydrodistillation allowed to obtain an EO with an efficiency of about 1.383%. In addition, the yield of the aqueous extract of Pimpinella anisum obtained by decoction is about 17.18%. The composition of the essential oil was analyzed by CPG-SM which identified 12 components of green anise with anethole as a major component with a percentage of 55.44%. Chronic exposure to 100 mg/L oral mercury chloride (HgCl2) during pregnancy and lactation resulted in decreased body weight and reduced brain weight compared to controls. However, the use of different techniques related to behavioural tests: the forced swimming test (FST), the Open field test, the double dark/light compartment test and the Morris pool test clearly reveal that HgCl2 intoxication has resulted in the presence of depression, locomotor hypoactivity, anxiety and spatial learning deficit. This HgCl2 intoxication led to impaired liver function (elevated serum ASAT, ALAT and (p increased serum concentrations of urea and creatinine ((P 0.05)) and hypoglycemia (p marked by a significant decrease in red blood cell count and hemoglobin (p kidney damage caused by mercury. In addition, treatment with essential oil and aqueous anise extract to improve the behaviour of rats caused by this metal as well as regulation of the various biomarkers of renal, hepatic and blood function. In conclusion, green anise has significant therapeutic properties in the face of the effect of mercury poisoning on young rats during development. |
| Note de contenu : |
Introduction ………..………………………………………………………………..………..p1
Revue bibliographique Le mercure I. Historique……..….………………………………………………...………………………p4 II.Généralités……………………….…………………………………………………………p4 III. Propriétés physicochimiques…………….……………………………………………. …p5 IV. Cycle du mercure……………………………..……………………………...…………..p6 V. Sources d’exposition ……………..……………………………………………………….p6 V.1. Thermomètres et baromètres à mercure……………..…………………….…………….p6 V.2. Les amalgames dentaires ……………..…………………….……………………..…….p7 V.3. Les vaccins ……………..…………………………….…….……………………..…….p7 V.4. Le poisson ………...…..…………………………….…….………..……………..…….p7 V.5. Les industries………...…..………………………….…….………..……………..…….p7 V.6. Du sol………...…..………………………………….…….………..……………..…….p8 VI. Les différentes formes du mercure………...…..……………………………….…..…….p8 VI.1.Le mercure élémentaire………...….............….…………………………….……..…….p8 VI.1.1. Toxicocinétique………...….....………….………………………………....…..…….p8 VI.1.1.1. Absorption………...….....………….…………………………………....…...…….p8VI.1.1.2. Transport et distribution.………………………………………………....…..…….p9 VI.1.1.3. Excrétion.………………………………………………………...……....…..…….p9 VI.2. Le mercure organique.……………...………………………………….…....…..…….p9 VI.2.1. Toxicocinétique………………………………………………………..……………p9 VI.2.1.1. Absorption.……………...…………………………………….….....….…....…….p9 VI.2.1.2. Transport et distribution………………………………….….…....……....…...….p10 VI.2.1.3.Excrétion……………………………………………………..…....……....…...…..p10 VI.3. Le mercure inorganique………………….……………………..…....….…....…...…..p10 VI.3.1. Toxicocinétique……………………..……………………...…....…….......…...……p11 VI.3.1.1. Absorption………………..……………………………….…....……........…...…..p11 VI.3.1.2. Transport et distribution………..……………………….……..……......…...….....p11 VI.3.1.3. Excrétion………..……………………….………………..…..……....…...….......p11 VII. L’intoxication aigue………..……………………….………………..………...….......p12 VIII. Intoxication chronique…………………………………………..……………………p13 IX. Les effets du mercure………..……………………….…………………......………......p13 IX.1. Effet sur le système nerveux ………..……………………...….………......……........p13 IX.2. Effet sur la fonction rénale………..……………………...….………......…….............p14 IX.3. Effet sur l’appareil cardiovasculaire…………………………………………............p14 IX.4 .Effet mutagène…………………………………………………………………………p15 IX.5.Effet concérogène………………………………………..………...…………………....p15 IX.6.Effet sur la fonction hépatique………………..……………………………………...…p15 L’aromathérapie I. Généralité…………………………………………………………………...……………..p16II. Les huiles essentielles (HE)…………………………………………………….……...…p17 II.1. Le mécanisme d’action des huiles essentielles ……………………………..………… p17 II.2. Les facteurs déterminant la qualité d’une huile………………………………...……... p18 II.3. Propriétés physico-chimiques des huiles essentielles………………………………….p18 II.4. La partie de la plante utilisée…………………………………………………………..p19 II.5.Toxicité des huiles essentielles…………………………………………………………p19 II.6. Les méthodes d’obtentions des huiles essentielles……………………………………..p19 II.6.1. La distillation à la vapeur d’eau…………………………...…………………………p19 II.6.2. L’expression à froid ou expression mécanique…………….……………………….p20 II.6.3. Distillation à sèche………………...……………………………..…………………..p20 III. Les extraits………………………………………………………………..……….…….p20 III.1.Les méthodes d’obtention des extraits…………………………….…………….……..p20 III.1.1. Extraction solide-liquide (soxhlet)………………………………………….……….p21 III.1.2. Extraction liquide-liquide……………………………………………..………….….p21 III.1.3.Extraction hydroalcoolique………………………………………………………..….p21 III.1.4. Extraction par un solvant organique……………………….……………………..….p21 III.1.5. L’enfleurage ou macération………..……………………………………………..….p22 III.1.6. Infusion………………………….………………………………………………..….p22 III.1.7. Décoction …………………………………...……………………………….………p22 IV. Méthodes d’identifications ……………………………………………………………....p23 IV.1.La chromatographie en phase gazeuse CPG……………………….…………………...p23 IV.2.Chromatographie en phase liquide à haute performance (HPLC)………………….…..p23 V. Les principaux constituants actifs dans la plante………………….………………….…...p24V.1. Les flavonoïdes…………………………………………………..…………………..….p24 V.2. Les tanins………………………………………………………………….……..…...…p24 V.3.Les anthocyanes ………………………………………………………………………....p24 V.4.Les anthraquinones…………...…………………………………………………………p25 V.5. Les coumarines………………...……………………………………………………….p25 V.6.Les saponines …………………………………………………………………………...p25 V.7.Les alcaloïdes……………..…………………………………………………………..…p26 V.8.Les polysaccharides…………………………………………..……………………...…..p26 Pimpinella anisum I. Généralité……………………………………...…………………………………………..p27 II. Classification botanique………………………………………………………………….p28 III. Composition chimique………………………………………….……………………….p28 IV. Pharmacocinétique ………...……………………………………………………………p29 V. Les effets de pimpinella anisum………………...………………………….…………….p29 V.1.Effet gastro-intestinal……………………………………………………………………p29 V.2.Effet broncho-dilatateur ……………………..…………………………………………..p29 V.3.Effet antidiabétique…………...…………………………………………...……………..p30 V.4.Effet antifongique ……………………………………………………………………..…p30 V.5.Effet antioxydant………………………………………………………………......……..p30 V.6. Effet oestrogénique ……………………………………………………………..……….p31 V.7.Effet sur le neuro-comportement…………………………………………..…...………..p31 V.8.Effet sur le système nerveux …………………………………..…………………………p31 VI. Toxicité……………………………………………………………………………………p32VI.1.Toxicité aigüe…………………………...……………………………………………….p32 VI.2.Toxicité subchronique…………………………………………………...………………p32 Matériels et méthodes I. Objectif ………………………… .…………………………….………………………...p34 II. Matériel végétal…………………………………………………………………………..p34 II.1. L’extraction de l’huile essentielle………………………………………....................…p34 II.2.Préparation de l’extrait aqueux……………………………………………………….....p35 II.3. La chromatographie en phase gazeuse couplés à la spectroscopie de masse (CPG/SM)……………………………………………………………………………...p35 II.4. Le screening phytochimique……………………………………………………...……..p36 III.Animaux d’expérimentation………………………………………………………...……..p39 III.2. Détermination du poids corporel et poids des organes……………………………… ...p41 IV.Les tests neurocomportementaux …………………………………………....……………p41 IV.1.Test de la nage forcé………………………..……………………………...……………p41 IV.2. L’open field………………………………………………………………………...…..p41 IV.3.Test de la piscine de Morris…………………………………...………………………..p42 IV.4.Le test du compartiment sombre/ clair………………………………….……..……….p43 V. Dosage du mercure par un spectrophotomètre d’absorption atomique à vapeur froide ………………………………………………………………………………….……..p44 VI. 1. Le prélèvement sanguin………………….………………………………………………….....p45 VI.2.Les dosages biochimiques……….……………………………………………….…….p45 VI.3.Détermination des paramètres hématologiques………………………..……………….p47 VII. L’étude histopathologique……………………………………………..………………..p47VIII. Analyses statistiques…………………………………………………….……………..p55 Résultats et interprétations I.Le rendement………………………………………………………………………….…..…p56 II.Résultat de la CPG/SM………………………………………………………………..……p56 III.Le screening phytochimique……………………..…………………………………..….…p56 IV.Résultats du traitement par l’huile essentielle………………………………………..……p57 IV.1. L’évaluation du poids…………………………………………………………..……...p57 IV.2. Résultats neurocomportementaux………………………………...…………………...p58 IV.3.Dosage du mercure au niveau sanguin et cérébral……………………………………..…….…p63 IV.4. L’histologie du cerveau………………………………………..……………………....p63 IV.5.Les paramètres biochimiques………………………………………………………..….p66 IV. 6.L’histologie du foie et du rein……………………………………………………….…p68 IV.7. Les paramètres hématologiques…………...…………………………………..……….p73 V. Résultats du traitement par l’extrait aqueux………………………………………..……..p75 V. 1. L’évaluation du poids…………………………………...……………………...……….p75 V.2. Résultats neurocomportementaux………………………………………………………..p76 V.3.Dosage du mercure au niveau sanguin et cérébral………………………..……………..p81 V.4.L’histologie du cerveau………………………………………………………………..…p81 V.5.Les paramètres biochimiques………………………..………………………………...…p83 V.6. L’histologie du foie et du rein…………………………………………………………...p86 V.6.Paramètres hématologique…………………………………...………………………..…p90 DiscussionI. L’effet du traitement par l’anis vert et du mercure sur le poids corporel et le poids des organes……………………………………………………………………………..…………p95 II.L’effet du Pimpinella anisum et du mercure sur le neurocomportement…………………..p96 III.Dosage du mercure sanguin et cérébral……………………………..……………...…….p101 IV.L’histologie du cerveau……………………………………………………………….….p102 V.Les paramètres biochimiques………………………………………..………………...….p104 VI. L’histologie du foie et du rein…………………………...……………………………....p106 VII. Les paramètres hématologiques………………………...…………………………...….p108 Conclusion générale Conclusion…………………………………………………………………………………...p111 |
Exemplaires (1)
| Code-barres | Cote | Support | Localisation | Section | Disponibilité |
|---|---|---|---|---|---|
| BUC-D 000225 | BUC-D 000225 | Livre | Bibliothèque PMB Services | Albums | Consultation sur place Exclu du prêt |
Documents numériques (1)
BUC-D000225 Adobe Acrobat PDF |
