| Titre : | Contribution à l’étude des effets de la plante médicinale Myrtus communis contre la toxicité du Cadmium chez le rat Wistar. Etudes biochimique et histologique. |
| Auteurs : | DELLAOUI Hafsa, Auteur ; Berroukche Abdelkrim, Directeur de thèse |
| Type de document : | texte imprimé |
| Editeur : | [S.l.] : Université de Saida– Dr. Moulay Tahar Faculté des sciences, 2020/2021 |
| Format : | 144 p / 29 CM |
| Accompagnement : | CD |
| Langues: | Français |
| Langues originales: | Français |
| Catégories : | |
| Mots-clés: | Cadmium ; Prostate ; Testicule ; Myrtus communis ; PSA ; Testostérone |
| Résumé : |
Le cadmium (Cd), métal lourd, s’accumulant dans les tissus cibles comme le foie,
reins, prostate et testicules et induisant des désordres métaboliques, hématologique et histologique. L’atténuation de la toxicité du Cd nécessite le recours à l’usage des plantes aromatiques. L’objectif de cette étude est d’évaluer les éventuels effets préventifs de la plante Myrtus communis (M.c) contre la toxicité induite par Cd chez le rat. L’activité anti-oxydante contre les radicaux libres et l’identification des composés bioactifs par HPLC ont été réalisés sur l’extrait brut des feuilles M. communis, Une étude in vivo a été réalisée sur six groupes de rats males (10 / groupe) durant une période de 60 jours. GR1 (témoins), GR2 (CdCl2 à 18 mg/kg), GR3 [CdCl2-EHM (1g/kg)], GR4 [CdCl2-EA (1g/kg)], GR5 (EHM) et GR6 (EA). L’accumulation tissulaire des résidus de Cd a été évaluée par spectrométrie d’absorption atomique (SAA). Le poids des animaux et les paramètres biochimiques (glycémie, l’urémie, créatinémie, transaminases et la formule sanguine) ont été déterminés. Les marqueurs tumoraux, antigène spécifique de la prostate (PSA) et testostérone, ont été dosés par la méthode immuno-enzymatique ELISA. Les rendements d’extraction étaient 31.4 % (EA) et 44.4 % (EHM). L’activité anti- oxydante (IC50) était 0.014 mg/ml (EHM) et 0.45 mg/ml (EA). L’analyse de l’extrait des feuilles par HPLC a permis l’identification de 30 composants avec une prédominance de flavonoïdes (29.5 % génistéine, 16.56 % méthyl-quercétine et 13.26 % kaempférol). Les animaux du GR2 (Cd) ont montré un poids 173.22 ± 1.96 g par rapport aux GR3 (170.80 ± 4,55 g) et GR6 (188.77 ± 4.02 g). La glycémie, urée, créatinine et transaminases étaient élevées dans GR2 par rapport aux témoins et autres groupes traités avec l’extrait des feuilles de M.c. Les dosages sériques de PSA et de testostérone ont révélé des concentrations respectives 0.45 et 1.49 ± 0.27 ng/ml chez GR2 (Cd) par rapport aux GR3 et GR4 traités respectivement avec Cd-EHM (0.07 et 0.85 ± 0.1 ng/ml) et Cd-EA ( était 10.3±0.15 g/dl (GR2) par rapport GR3 (12,38±0,30 g/dl). L’analyse par SAA a révélé une accumulation du Cd dans les tissus rénal, hépatique, prostatique et testiculaire (GR2) alors qu’elle était moindre (GR3 et GR4). L’étude anatomopathologique (GR2) a révélé une stéatose hépatique, une disparition des glomérules, une réduction du nombre de tubes séminifères et des spermatozoïdes et des lésions du tissu prostatique. Le traitement des rats, préalablement exposés au Cd, avec les extraits des feuilles de M.c. a amélioré l’organisation cellulaire et tissulaire. Les résultats de cette étude suggèrent que, grâce à ces propriétés pharmacologiques, les feuilles de Myrtus communis pourraient être utilisées dans la prévention contre les désordres métaboliques et lésions tissulaires induites par les polluants organique et métallique. |
| Note de contenu : |
INTRODUCTION GENERALE
1ère Partie: REVUE BIBLIOGRAPHIQUE Chapitre I Cadmium I.Histoire de la découverte ……………………………………………………....………….24 I.1 Généralité. …………………………………………………………………………………....25 I.2 Propriétés physico-chimique de cadmium…………………………………………………... 25 I.3 Toxicité du Cadmium……………………………………………………………………........27 I.3.1 Toxico cinétique………………………………………….……………………….…...27 I.3.1.1 Absorption. …………………………………………..….………………………….…...27 I.3.1.2 Distribution et Redistribution ………………………………...………………….……..28 I.3.1.3 Elimination du cadmium………………..………………………………………….30 I.3.2 Pathologie lient au cadmium………………………………………………….….…31 I.4 Cadmium et le stress oxydatif………………………………………………………….……..32 Références de chapitre I ……...…………………………………………………...34 Chapitre II Myrtus communis II. Myrtus Communis……………………………………………………………………42 II.1 Histoire de la plante Myrtus communis……………………………………………42 II.2 Description botanique…………………………………………………………..……42 II.2.1 Dénominations selon la nomenclature………………………………………………43 II.2.2 Caractère botanique de Myrtus communis L………………………………….……...43 II.3 Application en médecine traditionnelle……………………………………...…..….44 II.4 Compositions de myrtus communis…………………………………………..........46 II.4.1 Huile essentielle du Myrte et le leurs composants…………………………...…......46 II.4.2 Composants phénolique du myrte………………………………………...… ….........47 II.4.2.1 Acides phénoliques………………………………………………………...….......47 II.4.2.2 Tanins. …………………………………………………………………....……...48 9TABLE DES MATIERES II.4.2.3 Flavonoïde……………………………………………………………....…………48 II.5 Biodisponibilité des poly phénols………………………………………………..........49 II.5.1 Absorption…………………………………………………………………….……...49 II.5.2 Métabolisation des polyphénols dans le cycle entéro-hépatique……………….........51 II.5.3 Distribution tissulaire…………………………………………………… ……..……...52 II.5.4 Excrétion des polyphénols…………………………………………………..………..52 II.6 Extraction des polyphénols. …………………………………………….………….....53 II.7 Extraction de l’huile essentielle………………………………………………..……...53 II.8 Analyse chromatographique……………………………………………….…….…...54 II.8.1 Chromatographie Liquide à Haute Performance (HPLC)...........................................54 II.8.2 chromatographie en phase gazeuse (CPG)..................................................................55 Références de chapitre II……………………………………………….……...……….…57 2éme Partie: PRATIQUE PREMIER VOLET……….……………………………………………………....….…....62 III. 1 Matériel végétal …………………………………………………………....….….…….62 III.2 Présentation de la zone d’étude……………………………………………..……....63 III.3 Identification et authentification de la plante………………………………….…...63 III.4 Etude histologique des structures végétales sécrétrices d’huiles essentielles.........64 III 4.1 Etapes de la technique de double coloration………………………………………….65 III.5 Préparation des extraits…………………………………………………………...…66 III.5.1 Étape de séchage…………………………………………………………………...…66 III.5.2 Extraction……………………………………………………………………….........67 1.5.2.1 Hydro-distillation…………………………………………………………………….67 1.5.2.2 Macération………………………………………………………………………...…68 1.5.2.3 Infusion……………………………………………………………………………….68 III.6 Calcul du rendement d’extraction…………………………………………………...69 III.7.Analyses phyto-chimiques…………………………………………………………….69 III.8 Détermination de la composition chimique………………………………………….71 III.8.1 Analyse des extraits par l’HPLC……………………………………………………...71 III.8.2 Analyse de l’huile essentielle par CPG/SM………………………………………….72 III.9 Evaluation de l’activité anti-oxydante……………………………………………….73 DEUXIÈME VOLET……………….………...…………………..……………………...…75 III.10 Préparation des animaux…………………………………...……………………….75 III.11 Mode d’alimentation…………………………………………………………………75 III.12 Préparation du Traitement ………………………………………………………....76 10TABLE DES MATIERES III.13 Préparation la solution de cadmium………………………………………….........76 III.14 Traitement des rats…………………………………………………………………..77 III.14.1 Administration des solutions préparées aux animaux……………………… ….…....78 III.14.2 Suivi du poids des rats……………………………………………………………….79 III.14.3 Sacrifice des animaux et préparation des échantillons sanguins et tissulaires………79 III.15 Méthodes de dosage………………………………………………………………….79 III.15.1 Analyses biochimiques………………………………………………………………79 III.15.1.1 Exploration de la fonction rénale………………………………………………….79 III.15.1.2 Exploration de la fonction hépatique………………………………………………81 III.15.1.3. Détermination quantitative de glucose……………………………………………82 III.15.2 Hémogramme, Numération de la formule sanguine(FNS)........................................83 III.15.3 Dosage des marqueurs biologiques de la fonction reproductrice mâle……………..85 III.15.3.1 Dosage sérique de l’hormone testostérone………………………………………..85 III.15.3.2 Dosage sérique du l’antigène spécifique de la prostate (PSA)..............................85 III.15.4 Dosage du cadmium tissulaire (Pris de document est la propriété du Centre National de Toxicologie).......................................................................................................................85 III.16 Etude histologique des organes…………………………………………………......88 Références………………………………………………………...………………………….94 3éme Partie: RESULTATS ET DISCUSSION PREMIER VOLET.. ……………………………………………………………….………98 IV.1 Histologie de la feuille Myrtus communis……………………………………….........99 IV.2 Screening phyto-chimique et ses principes bioactifs………………………………...99 IV.3 Activité anti-oxydante des extraits de feuilles de Myrtus communis………........101 IV.4 Chromatographie HPLC et en phase gazeuse CPG…………………………..........102 IV.5 DISCUSSION…………………………………………………………………….. …106 Références …………….…………………………………………….……………………...109 IV.6 Etude physiologique………………………………………………………...………….112 IV.6.1 Variation du poids corporel………………………………………………………….112 IV.6.2 Variation de poids des organes……………………………………………………....114 IV.6.3 Observation macroscopique……………………………………………………….…115 IV.7 Dosage biochimique……………………………………………………………... ….116 IV.7.1 Evaluation du taux de glycémie…………………………………………............ ….116 IV.7.2 Effets du Cadmium sur la fonction rénale et l’action protectrice des extraits.….. ….116 IV.7.3 Effets du Cadmium sur la fonction hépatique………………………….………........118 IV.7.4 Dosage sérique de la testostérone et le (PSA)............................................................119 IV.8 Effets du Cd sur les paramètres hématologiques ……………………….…….…........120 11TABLE DES MATIERES IV.8.1 Paramètres de la lignée érythrocytaire………………………………………….. …..120 IV.8.2 Paramètres de la ligne leucocytaire…………………………………………….........120 IV.9 Dosage du cadmium tissulaire……………………………………………………........123 IV.10 Histologie……………………………………………………………………………..124 IV.10.1 Etude macroscopique……………………………………………………………….124 IV.10.2 Etude microscopique…………………………………………………………......126 IV.10.2.1 Effets du traitement sur les tissus régulateurs de métabolisme…………………. 126 A. Tissu hépatique………..…………………………………...……………………….126 B. Tissu rénale……………………………………………………………...……….. ..128 IV.10.2.2 Effets du traitement sur la voie génitale masculine………………………………130 A. Tissu testiculaire…………………………………………………….………….......130 B. Tissu prostatique……………………………………………………….………...…132 IV.11 DISCUSSION…………………………………….……………………………........134 Références…………………………………………………………………………...……...144 CONCLUSION GENERALE Annexe |
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